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EFC est une technologie homogène et non radioactive
de détection basée sur la construction génétique
de fragments de la ß-galactosidase – un fragment
protéique large (Enzyme Acceptor,
EA) et un petit peptide (Enzyme Donor,
ED). Séparément, les deux fragments de
la ß-galactosidase ne sont pas actifs, mais une fois
en solution, ils se recombinent rapidement pour former une
enzyme ß-galactosidase qui hydrolyse les substrats afin
de produire un signal de Chimiluminescence ou de Fluorescence
facilement détectable.
Liens vers les sections suivantes:
| Un signal fiable et reproductible:
EFC est un signal amplifié enzymatiquement, conduisant
à un ratio signal sur bruit très élevé
et d’une grande précision (facteur Z’=
0,7).
Des interférences minimisées :
La chimioluminescence minimise les interférences
avec la librairie de composés, n’introduisant
aucun signal artificiel dut à une
Des protocoles simples:
Des protocoles simples comprenant, l’addition
de réactifs, leur mélange et la lecture,
facilite leur automatisation. Les analyses EFC ne nécessitent
pas de lavage, de centrifugation. |
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Pratique:
Utilisez vos appareils déjà présents
dans votre laboratoire, aucun investissement particulier
ne sera nécessaire. Vous pourrez utiliser votre
robot fixation aspécifique de billes ou de marqueurs
secondaires.
Flexibilité:
Les protocoles sont miniaturisable au format microplaque
96, 384 et 1536 puits, engendrant une réduction
des coûts importante. de pipetage, un large éventail
de luminomètre, des lecteurs de microplaque et
des caméras CCD.
Réduction des coûts:
L’excellente reproductibilité et les faibles
variations lot à lot permettent d’optimiser
les réactifs, réduisant ainsi significativement
le coût à l’analyse. |
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La détection par chimioluminescence d'EFC est basée
sur deux composantes clés - le Donneur d'Enzyme
(ED) et l'Accepteur d'Enzyme (EA). Séparément,
ces fragments sont inactifs, mais en se mélangeant
ils se recombinent spontanément pour former une
enzyme ß-galactosidase active, qui hydrolyse un
substrat qui peut être détecté par
un lecteur de microplaque. |
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Donneur d’Enzyme (ED), Marqueur EFC
ED est un petit peptide (4-11KD) non isotopique, n’utilisant
pas de bille marquée dans le cadre du système
d’analyse EFC. Il peut-être soit chimiquement
conjugué pour des immunoanalyses compétitives
In Vitro sur des composés biochimiques ou bien
exprimé par recombinaison dans des cellules comme
une protéine de fusion (Pro Label) pour mesurer
la translocation et l’expression protéique.
Quand il est exprimé seul, le Pro Label est instable
et se retrouve rapidement dégradé, ce
qui réduit significativement le bruit de fond.
Comme un marqueur, l'ED est un petit peptide qui peut
être attaché par covalence ou exprimé
avec une variété de petites molécules
ou protéines sans changer leurs propriétés
et leurs fonctions. Parce que ED est un peptide sans
conformation tridimensionnelle, il n’y a aucune
restriction de taille ou de poids moléculaire
pour ce qui est couplé à ED.
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Accepteur d’Enzyme (EA), Enzyme inactive
EFC pour la détection
Accepteur d’Enzyme (EA), Enzyme inactive EFC pour
la détection
EA est une enzyme ß-gal inactive. C’est
une forme inactive car elle est dépourvue des
acides aminés correspondant au peptide ED. En
solution, EA peut rapidement se recombiner avec l'ED
ou des protéines de fusion de type Pro Label
grâce à un processus appelé complémentation
pour former une enzyme active ß-gal EFC.
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| L’enzyme EFC active et son substrat pour
la détection
ß-galactosidase (E.C. 3.2.1.23) hydrolyse spécifiquement
et de manière reproductible de nombreux substrats.
Puisque l'enzyme active d'EFC -galactosidase est comparable
à l'activité de l'enzyme ß-galactosidase
native, elle hydrolyse les substrats spécifiques
pour produire un signal détectable par une variété
de lecteurs de microplaque - colorimétriques,
d'intensité fluorescente, de luminomètres,
de lecteurs à plusieurs modes de fonctionnement
et de caméras CCD. Les analyses EFC et les solutions
liées à l’EFC sont préférentiellement
développées en utilisant le substrat de
chimioluminescence lequel produit un signal de forte
intensité avec un faible bruit de fond car elle
n’est pas affecté par la fluorescence naturelle
des composés.
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de nouveau au dessus
La recherche de drogue exige que les technologies d’analyse
soient fiables et reproductibles et doivent être facilement
adaptées sur tout type d’appareil de pipetage
et de lecture. Parce que ED est un marqueur flexible, la technologie
EFC a été adapté à un grand nombre
de cible biomoléculaire utilisant des formats d’analyse
In Vitro biochimique et des formats d’analyse de cellule
entière In Vivo.
Les analyses in vitro biochimiques sont composées comme
des immunoanalyses concurrentielles, où des analytes
sont détectés en solution, sans étapes
de séparation ou de lavage, conduisant à une
augmentation de la sensibilité et de la précision
comparées aux immunoanalyses conventionnelles. Dans
les analyses biochimiques, l'ED est conjugué au ligand
d'intérêt (par exemple AMPc, au cortisol, ou
à un substrat phosphorylé de kinase) qui concurrence
le ligand libre pour se lier à une protéine
de liaison. Selon le ligand d'intérêt, la protéine
de liaison peut être un anticorps, une enzyme, ou un
récepteur.
IEn l'absence du ligand libre,
les ED conjugués au ligand sont capturés
par la protéine obligatoire
et sont indisponibles pour la complémentation avec
EA, ayant pour
résultat l’absence de signal.
En présence du ligand
libre, les sites de fixation de la protéine
sont occupés, permettant
à l’ED-conjugué libre
de se lier avec l'EA,
formant l'enzyme active EFC ß-galactosidase qui hydrolyse
le substrat produisant un signal détectable. Le signal
positif est généré proportionnellement
par la quantité de ligand libre lié à
la protéine de fixation.
Les analyses In vitro biochimique sont désignés
par le terme, analyse HitHunter™, et ont été
développées pour les applications suivantes
:
- GPCR
et Second Messager
- Liaison
et activité de kinases
- Liaison
des récepteurs nucléaire hormonaux
- Activité
protéase
de nouveau au dessus
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La technologie EFC de détection peut-être
adaptée In Vivo, en utilisant un vecteur d’expression
pour cloner un gène d’intérêt
qui sera par la suite transfecté dans une lignée
cellulaire exprimant ED, protéine de fusion dénommée
ProLabel.
Les lysats des lignées cellulaires exprimant
le ProLabel sont mesurés en utilisant la technologie
EFC par addition de EA et du substrat.
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PathHunter™ comble le fossé entre le criblage
à haut débit (HTS) et le High content
analysis (HCA), en appliquant la complémentation
EFC aux cellules entières grâce à
un système de détection In Vivo. La famille
de produits PathHunter™ est un système
de cellules intègres qui utilise la « géolocalisation
» dans un environnement de cellules vivantes pour
étudier la translocation de cibles.
EA et ED peuvent être co-exprimés dans
la cellule pour mesurer la translocation nucléaire.
EA est spécifiquement localisé dans le
noyau grâce à une construction NLS, tandis
que la protéine de fusion native, ProLabel, maintient
dans le cytoplasme la protéine de fusion cible.
La « géocomplémentation »
apparaît seulement quand le ProLabel de fusion
se transfère dans le noyau en réponse
à un stimuli extérieur. Donc la technologie
EFC PathHunter™ fournit les moyens de rechercher
les voies cellulaires résultant de la translocation.
Par conséquent les analyses PathHunter™
ne nécessite pas de technologie d’imagerie,
les analyses sont possible sur tout les robots de pipetage
pour un accroissement de votre débit dans un
environnement de cellules entières en utilisant
simplement les appareils de pipetage et les lecteurs
de microplaques déjà présent dans
tout les programmes de recherche.
Les analyses de cellules intègres et des cibles
utilisant la technologie EFC sont dénommées
comme PathHunter™ et peuvent dès à
présent couvrir les applications suivantes :
• La translocation des protéines
• L’expression des protéines
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Whole-cell assays and targets utilizing EFC technology are
referred to as PathHunter and can currently cover the
following applications:
- Protein Translocation
- Protein Expression
de nouveau au dessus
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